中国"脓毒症早期预防与阻断"急诊专家共识
中华危重病急救医学, 2020,32(05) : 518-530. DOI: 10.3760/cma.j.cn121430-20200514-00414

脓毒症(Sepsis)是感染引起宿主反应失调,导致危及生命的器官功能损害的症候群,是一个高病死率的临床综合征[1]。脓毒症不仅严重威胁人类健康,也给医疗卫生带来了巨大的经济负担。有学者对1979至2015年27个发达国家的成人脓毒症发病率及病死率相关研究进行了荟萃分析,结果显示,脓毒症发病率为年288/10万,而近10年间脓毒症发病率为年437/10万,病死率为17%;严重脓毒症发病率为年270/10万,病死率为26%[2]。很多脓毒症相关研究未纳入发展中国家的相关数据,有分析显示,在发展中国家及欠发达国家脓毒症发病率和病死率更高[3]

我国脓毒症发病率研究绝大多数来自重症监护病房(ICU)住院患者。2020年,一项针对全国44家医院ICU的研究报告显示,ICU脓毒症的发病率为20.6%[4]。与发病情况相似,脓毒症病死率的数据也大多来自ICU患者。前文提到的ICU多中心研究中,脓毒症患者病死率为35.5%,严重脓毒症病死率高达50%及以上,而且符合Sepsis-3与Sepsis-2诊断标准患者的病死率差异并没有统计学意义[4]。在澳大利亚和新西兰,严重脓毒症患者的住院病死率为18.4%~35.0%[5];而在美国,脓毒症的病死率(由ICD-9-CM定义)已经从1979年的27.8%降到了2000年的17.9%[6]

值得注意的是,我国相关研究中脓毒症的病死率高于发达国家。一项基于人口的脓毒症流行病学调查显示,2015年全国有1 025 997人死于脓毒症,占总病死率的12.6%[7]。另一项对2006至2016年759例严重脓毒症患者的单中心回顾性研究数据显示病死率高达36.6%[8]。虽然正确合理地应用抗菌药物是成功救治脓毒症患者的关键一环,也是降低病死率的主要因素之一,但其他积极性辅助治疗,如液体复苏、免疫调理和营养支持治疗等措施也在一定程度上防止了脓毒症进一步加重,发展成严重脓毒症和脓毒性休克[9]

鉴于脓毒症存在一定的发病率和较高的病死率[4,10],有关脓毒症的诊断和治疗自2001年以来一直是急诊医学、重症医学、感染病学,甚至外科学等领域研究的热点话题。脓毒症专家先后提出了脓毒症诊断的1.0、2.0和3.0版本,也先后提出了诸如"拯救脓毒症行动""早期目标导向治疗(EGDT)""集束化治疗"等理念和"限制性通气""最佳呼气末正压(PEEP)""保护性肺通气"等方法。然而,20年过去了,脓毒症的发病率和病死率并未见明显降低[10]

基于急诊医学的专业特点,2018年5月,中国急诊专家提出开展"中国预防脓毒症行动"(PSCC),主张对脓毒症要做到"早预防、早发现、早干预,降低脓毒症的发病率和病死率"的"三早两降"方针,提出了"脓毒症前状态"和脓毒症"未病先防,既病防传"的防治理念,将预防脓毒症发生和阻断脓毒症进展作为行动的关键节点;把切断感染发展为器官功能衰竭的中间环节,做好围脓毒症期的感染控制、炎症调控、内皮细胞保护及凝血调节作为切入点。由于严重感染患者往往首诊于急诊科,故从急诊开始采取措施预防脓毒症的发生不仅重要,而且可行,能够实现真正有效的EGDT。在文献检索中我们发现,2017年1月,世界卫生组织(WHO)针对脓毒症也提出了"预防、诊断和临床处理一体化干预"的理念,并在2017年5月26日WHO例行会议上,与会专家达成一致意见:改善脓毒症的预防和治疗[11]

1 急性感染患者的识别

感染性疾病是急诊科最常见疾病,是脓毒症发生的前提。及时确定急性感染患者,并给予合理治疗是PSCC的第一个环节。由于感染性疾病表现的多样性,判断患者是否存在感染也成为急诊科医生的第一难题。

急性感染是指短时间内(<72 h)病原微生物导致机体组织、器官炎性改变的疾病[12] ,引起急性感染的病原体包括细菌、病毒、真菌、支原体或衣原体、寄生虫等。急性感染的临床表现包括全身表现和局部表现。

1.1 根据全身表现确定感染
1.1.1 体温变化:

诊断感染最重要的临床依据是患者的体温变化,特别是急性发热可占感染患者表现的90%以上。部分体弱或免疫力低下的患者可能缺少发热的表现,有些严重感染的患者出现低体温,也有些患者因在来院前服用退热药物或物理降温而造成体温正常的假象。全身炎症反应综合征(SIRS)是脓毒症发展的重要中间环节,也曾经是诊断脓毒症的指标之一。在SIRS的诊断标准中,首位的指标就是体温变化。因此,任何体温升高或异常降低的患者,都应当考虑有急性感染的可能性。

1.1.2 白细胞变化:

外周血白细胞变化是急性感染的第二个特征性变化,也有助于区别不同的感染。白细胞计数增高是急性细菌感染最具特异性的改变之一,分类检测时出现嗜中性粒细胞增高或明显核左移,是支持急性细菌感染的有力证据。白细胞减少可见于病毒感染及部分特殊感染。

1.1.3 感染生化标志物:

感染生化标志物是近年来发展起来的对感染判断有益的临床检测指标,能够帮助急诊医生快速判断感染的存在及推断可能感染病原体的类型。目前常用的感染生化标志物包括血清C-反应蛋白(CRP)、降钙素原(PCT)、白细胞介素-6(IL-6)、淀粉样蛋白(SAA)及肝素结合蛋白(HBP)[13]

1.1.3.1 CRP:

CRP是一种急性时相反应蛋白,大多数感染可引发其浓度迅速上升,通常于感染后2 h开始升高,24~48 h达高峰。细菌感染时CRP升高显著,而病毒感染时大多正常或轻微升高。因此,CRP通常作为鉴别细菌或病毒感染的参考指标之一。但CRP的细菌感染界值尚不明确,有临床研究者建议,可采用CRP 40 mg/L作为细菌感染的界值,但也有人认为CRP>20 mg/L即可考虑为细菌感染。CRP半衰期为18 h,当感染得到控制后可在1~2 d内快速下降。

1.1.3.2 PCT:

PCT是一种无激素活性的糖蛋白,PCT水平与细菌感染的严重程度呈正相关。当PCT为0.10~0.25 μg/L时,提示细菌感染的可能性不大;当PCT为0.25~0.50 μg/L时,提示可能存在需要治疗的细菌感染;而当PCT>0.50 μg/L时,提示很可能存在需要治疗的细菌感染[14]。多数专家建议将PCT为0.50 μg/L作为脓毒症的诊断界值。PCT在感染2~4 h后迅速上升,12~48 h达到峰值。PCT的特异性高,受到国内外众多指南共识的统一推荐。2019新型冠状病毒肺炎(新冠肺炎)诊疗方案中指出,多数患者的PCT是正常的,这说明PCT在病毒感染中一般不升高,可以作为细菌感染的特异性标志物。

1.1.3.3 IL-6:

IL-6是由IL-1与肿瘤坏死因子-α(TNF-α)诱导产生的多效细胞因子,是一种多功能糖蛋白,其由212个氨基酸组成,在炎症反应过程中发挥着核心调节功能,是关键的炎症反应递质。IL-6的检测值在细菌感染时明显升高,且与HBP和SAA等水平呈正相关,可以作为感染评估和检测的常用指标,且其水平与患者疾病的严重程度呈正相关[15]。此外,IL-6对脓毒症及病情严重程度的判定具有重要意义。有研究结果显示,脓毒症患者血清IL-6水平显著高于非脓毒症患者,脓毒性休克患者血清IL-6水平显著高于非脓毒性休克患者[16]

1.1.3.4 SAA:

SAA是一种敏感的急性时相反应蛋白。机体受到细菌和病毒等刺激后产生一系列细胞因子,从而刺激肝脏细胞合成分泌大量的SAA进入血液,在5~6 h内升高幅度达正常值的10~1 000倍。因此,SAA可作为反映机体感染和炎症控制的敏感指标。SAA水平不受性别和年龄影响,一般与CRP联合鉴别细菌和病毒感染。当SAA和CRP同时升高时,提示可能存在细菌感染;当SAA升高而CRP不升高时,常提示病毒感染。SAA半衰期约50 min,当机体抗原清除后,SAA则迅速降至正常水平,因此,SAA可作为反映机体感染和炎症控制的敏感指标。

1.1.3.5 HBP:

HBP是机体激活中性粒细胞释放嗜酸颗粒的一种蛋白分子。研究显示,脓毒症患者HBP在IL-6水平正常或轻度升高时即明显升高,且其诊断脓毒症的准确率大于其他细胞因子[17,18],特别是在严重细菌感染的早期、快速诊断方面有重要价值。HBP作为一种急性时相蛋白,是评估脓毒症患者疾病严重程度的有效生物标志物,在脓毒性休克患者的早期诊断和疗效监测中更为重要。

1.2 根据局部症状、体征确定感染:

有些患者,特别是老年患者或免疫力低下的患者,可能缺乏感染的全身性反应。这类患者感染部位的特征性症状和体征能够帮助我们确定或怀疑感染存在的可能性,如明确的咳嗽、咳脓痰提示呼吸道感染,急性意识改变或头痛提示中枢神经系统感染,尿频、尿急、尿痛及腰痛提示泌尿系统感染,腹痛、腹泻伴有脓血便提示腹腔或消化道感染等。

1.3 急性感染及疑似感染的确定:

依据上述研究结果和临床经验,患者有如下表现时可以考虑急性感染的存在:① 有急性(72 h之内)发热或低体温;② 白细胞总数增高或降低;③ CRP升高、IL-6升高;④ PCT、SAA及HBP升高;⑤ 有明确或可疑的感染部位。确定感染:①~③ 项中有2项+④ 有明确结果,可以协助确定病原体类型,或+⑤ 有明确表现可以帮助确定感染部位。疑似感染:①~③ 项中有1项+④ 无确定性结果,或+⑤ 有可疑感染部位。

2 脓毒症高危人群筛选
2.1 脓毒症易感人群:

越来越多的研究显示,脓毒症的发生与人体特定基因有关。近年来研究证实,急性感染、脓毒症及脓毒性休克患者脓毒症生物标志物基因的表达存在明显差异,并提出可以其作为筛查脓毒症的有用指标[19]。基因检测作为脓毒症生物标志物的敏感度和特异度均高于PCT。这说明脓毒症的发生与人体的体质有关,也提示未来我们可以开发针对感染患者脓毒症生物标志基因的快速检测手段。

此外,年龄、基础疾病、营养不良及免疫力低下等也是脓毒症发生的重要因素。2007年一项多中心调查结果显示,严重脓毒症发病率和住院病死率的危险因素包括年龄、恶性肿瘤、革兰阳性(G+)菌感染及侵袭真菌感染[20];且入院时急性生理学与慢性健康状况评分Ⅱ(APACHEⅡ)和序贯器官衰竭评分(SOFA)、严重脓毒症/脓毒性休克、急性肺损伤/急性呼吸窘迫综合征(ALI/ARDS)、急性肾损伤亦是评估脓毒症及其病死率的重要因素[21]。2014年的另一项多中心前瞻性观察性队列研究结果表明,APACHEⅡ、SOFA、血流感染、癌症病史与病死率显著相关[22]。2016年的一项对脓毒症患者1年病死率的分析显示,年龄、急性肾衰竭、合并真菌感染、阴离子间隙和肺部感染是1年病死率的预测因素[23]

2.2 易引起脓毒症的病原类型及感染部位:

对引发脓毒症的感染病原体研究发现,各种感染性病原体在脓毒症中所占的比例不同[24,25],占最大比例的仍然是细菌,其次是病毒。国内流行病学研究提示,半数以上的脓毒症患者为革兰阴性(G-)菌感染[23]。在Zhou等[22]的研究中,G-菌的感染率可达62.5%,而G+菌仅占14.5%;但更多的研究者认为最常引起脓毒症的致病菌为G+[26,27]。真菌性脓毒症的发病率在过去10年有所增加,但仍低于细菌性脓毒症[25,28]。这种差异可能源于我们尚缺乏大规模流行病学研究,不同地区及ICU的病原学有所不同;也可能与抗菌药物的使用导致病原学的种类发生变化有关[29]。各种病毒感染也是引起脓毒症的重要原因。目前全球流行的新冠肺炎就是由新型冠状病毒(2019-nCoV)通过产生细胞因子及干扰肾素-血管紧张素系统(RAS)导致多器官功能障碍综合征(MODS)[30]

引起脓毒症的感染部位也是研究的热点之一。2007年的一项多中心研究显示,腹部是脓毒症最常见的感染部位(72.3%),其次是肺部(52.8%)[20];而2014年的一项多中心前瞻性研究显示,肺部感染是脓毒症患者最常见的原因,占所有脓毒症的50%以上,其次是腹腔感染及泌尿道感染[22]。研究显示,感染部位不明、胃肠道或肺部感染所致脓毒症的病死率为50%~55%,相比之下,泌尿道感染引起脓毒症的病死率仅为30%[31];而另一项纳入近8 000例脓毒性休克患者的回顾性多中心队列研究也报道了相似的结果,即肠缺血所致脓毒症患者病死率最高(78%),尿路梗阻相关泌尿道感染所致脓毒症患者病死率最低(26%)[32]

综上所述,急性感染患者发生脓毒症的高危因素包括:① 高龄、营养不良;② 腹腔、肺部和泌尿道感染;③ 恶性肿瘤、免疫抑制、呼吸功能障碍和心血管功能障碍等基础疾病。在急诊临床对这类高危人群需要给予高度重视,通过观察临床表现,筛查生物标志物,及早防范。

3 脓毒症的诊断与临床疑似
3.1 脓毒症的诊断与SOFA评分:

Sepsis-3提出当患者达到"感染+ SOFA评分≥2分"可以诊断为脓毒症。严格来说,Sepsis-3涵盖了脓毒症定义和脓毒症患者的临床诊断标准。

SOFA是通过测定主要器官功能损害程度对患者进行预后判断的评分系统,多用于ICU患者[33]。通常建议在入住ICU后24 h计算SOFA评分,之后每48 h再次计算,因此被称为"序贯"器官衰竭评分。由于需要各种检验数据及序贯性评价,SOFA评分对住院患者更加合适,但对于急诊科早期诊断和快速诊断有一定局限性。SOFA评分的平均值和最高值能够预测脓毒症患者的病死率;与入院时相比,入院48 h SOFA评分呈升高趋势患者的病死率至少为50%[34],但SOFA评分对预测脓毒症的发生参考意义不大。SOFA评分计算方法见表1[33,35]

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表1

SOFA评分计算方法[33,35]

表1

SOFA评分计算方法[33,35]

系统/器官 变量 评分
0分 1分 2分 3分 4分
呼吸系统 PaO2/FiO2(mmHg) ≥400 <400 <300 <200 <100
血液系统 PLT(×109/L) ≥150 <150 <100 <50 <20
肝脏 TBil(μmol/L) <20 20~32 33~101 102~204 ≥205
中枢神经系统 GCS评分(分) 15 13~14 10~12 6~9 <6
肾脏 SCr(μmol/L) <110 110~170 171~299 300~440 >440
尿量(mL/d) ≥500     <500 <200
循环 MAP(mmHg) ≥70 <70      
多巴胺(μg·kg-1·min-1     ≤5 >5 >15
多巴酚丁胺     任何剂量    
肾上腺素(μg·kg-1·min-1       ≤0.1 >0.1
NE(μg·kg-1·min-1       ≤0.1 >0.1

注:SOFA为序贯器官衰竭评分,PaO2/FiO2为氧合指数,PLT为血小板计数,TBil为总胆红素,GCS为格拉斯哥昏迷评分,SCr为血肌酐,MAP为平均动脉压,NE为去甲肾上腺素;1 mmHg=0.133 kPa;空白代表无此项

3.2 急诊疑似脓毒症:

依据Sepsis-3诊断标准,器官功能损伤成为必然指标。但在急诊科就诊的感染患者出现器官功能损害之前,可能表现为有效循环血容量不足和严重炎症反应等,专家组认为可以定义为"脓毒症前期"或"疑似脓毒症"。确定这个时期对PSCC更为重要。急诊科医生通常依据临床资料作出经验性诊断,并依据病情评分将可能发展为脓毒症的患者进行排查。

3.2.1 快速序贯器官衰竭评分(qSOFA):

qSOFA被Sepsis-3推荐用于可疑脓毒症的筛查(表2[1]。分析显示,qSOFA评分越高,死亡风险越高,但预测效度在各队列之间有显著差异[36]。在一项纳入879例疑似感染患者的研究中,qSOFA评分对院内病死率的预测效度与完整SOFA评分相似:评分<2分时,病死率均为3%;评分≥2分时,qSOFA及SOFA评分预测的病死率分别为24%和18%[36]。但也有研究者对qSOFA评分的敏感度与特异度提出质疑。2018年一项纳入38项研究的Meta分析显示,与SIRS标准相比,qSOFA评分预测脓毒症病死率的敏感度更低(61%比88%),但特异度更高(72%比26%)[37]。与非ICU脓毒症患者相比,qSOFA评分预测ICU脓毒症患者病死率的敏感度更高(87%比51%),特异度更低(33%比80%)。但相比之下,关于急诊科患者的其他回顾性研究指出qSOFA评分的价值有限,其中一项研究报道qSOFA评分识别脓毒症的能力不如SIRS标准[38],另一项研究则报告qSOFA评分预测28 d死亡的价值较低[39]

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表2

快速序贯器官衰竭评分(qSOFA)计算方法[1]

表2

快速序贯器官衰竭评分(qSOFA)计算方法[1]

临床表现 评分
1分 0分
意识形态改变
SBP≤100 mmHg
RR≥22次/min

注:SBP为收缩压,RR为呼吸频率;1 mmHg=0.133 kPa

3.2.2 英国国家早期预警评分(NEWS):

有研究报道,改良早期预警评分(MEWS)、NEWS评分和SIRS评分等早期识别评分系统在预测非ICU患者死亡及ICU转入方面优于qSOFA[40,41]

在急诊临床工作中,反映病情变化最敏感的指标不是呼吸、意识改变及血压变化,而是心率(脉搏)的变化。由英国专家提出的早期预警评分(EWS)、MEWS评分和NEWS评分(表3[42],是急诊医学领域公认较为实用的快速评价和病情严重程度分级工具。上述评分的评价指标在医院急诊科都可以得到,而且加入了吸氧措施的修正,对病情的判断更加准确,特别是有心肺功能改变的患者。因此,NEWS评分比qSOFA评分更能全面地评估患者的危重情况。我国一项纳入116例急诊老年脓毒症患者的研究证实,NEWS评分在急诊脓毒症患者病情评估中具有优势[43]

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表3

英国国家早期预警评分(NEWS)计算方法[42]

表3

英国国家早期预警评分(NEWS)计算方法[42]

变量 评分
3分 2分 1分 0分 1分 2分 3分
RR(次/min) ≤8   9~11 12~20   21~24 ≥25
SpO2 ≤0.91 0.92~0.93 0.94~0.95 ≥0.96      
吸氧          
HR(次/min) ≤40   41~50 51~90 91~110 111~130 ≥131
SBP(mmHg) ≤90 91~100 101~110 111~219     ≥220
体温(℃) ≤35.0   35.1~36.0 36.1~38.0 38.1~39.0 ≥39.1  
意识       意识清楚 V P U

注:RR为呼吸频率,SpO2为脉搏血氧饱和度,HR为心率,SBP为收缩压,V为对声音有反应,P为对疼痛有反应,U为无反应;1 mmHg=0.133 kPa;空白代表无此项

3.2.3 急诊疑似脓毒症诊断标准:

① 感染或疑似感染患者;② qSOFA评分≥2分;③ SOFA评分为1分;④ NEWS评分4~6分。诊断标准:患者发生以上 ① +②~④ 中任意一项临床表现即可诊断为急诊疑似脓毒症。

4 脓毒症的预防与阻断
4.1 及时确定高危人群:

所谓高危人群即脓毒症易感人群,包括特定基因人群及脓毒症高发生率的感染部位或病原体感染的人群。对老年、营养不良、有基础疾病或免疫力低下的患者,应当尽快确定其感染部位及可能病原体;对严重肺部感染、腹腔感染及泌尿系统感染的患者,应当及时进行细胞因子筛查。任何感染患者都应当及时进行疑似脓毒症评估,对SOFA评分为1分、qSOFA评分≥2分或NEWS评分4~6分的患者应当进行重点关注,采取脓毒症阻断措施,并建议每2 h进行重复评分。

4.2 感染控制
4.2.1 病原微生物检测:

引起急性感染的病原体包括细菌、病毒、真菌、支原体或衣原体、寄生虫等,但导致脓毒症的病原体主要为细菌、病毒和真菌。尽快确定病原体,并采取针对性抗微生物治疗是治疗感染性疾病的重点。传统的微生物培养存在耗时长、覆盖面窄的缺陷,急性感染更需要病原学的快速检测体系。针对常见的细菌和病毒等病原体,目前已有的快速检测方法包括:① 肺炎链球菌尿抗原检测、军团菌尿抗原检测、GXpert艰难梭菌检测及Film Array/罗氏Cobas/Luminex等推出的多重病原体检测平台等细菌检测方法;② 真菌荧光染色、六胺银染色耶氏肺孢子菌检测等,新型隐球菌抗原检测、G试验、GM试验和曲霉免疫球蛋白(IgG和IgE)等真菌检测方法;③ 抗原和核酸检测,各种病毒的实时聚合酶链反应(PCR)等病毒检测方法。目前,二代测序技术不断成熟并应用于临床,可覆盖上千种病原体,最大程度地避免了漏检,已成为病原学诊断的有力手段[44]

4.2.2 抗感染治疗:

虽然病毒、细菌和真菌等都有引起脓毒症的可能性,但在临床上依然以细菌和病毒引起的脓毒症为多。病毒感染目前尚缺乏特效治疗,通常采用免疫调节或中药制剂控制感染。在细菌感染中,控制感染不仅是预防脓毒症的重要措施,也是防止感染直接造成死亡的重要措施。抗菌药物的选择以覆盖可疑病原体及在可能感染部位浓度较高的抗菌药物为宜。同时,需要考虑患者的年龄、免疫状态和过敏反应等特殊情况。在急诊科抗感染治疗中,我们既要考虑覆盖病原体,控制感染,又要考虑避免抗菌药物滥用造成耐药菌的增加。快速病原体检测以及基于感染部位和高发致病菌的经验性思维将是我们选择抗菌药物的重要依据。《热病:桑福德抗微生物治疗指南2018》对临床抗感染治疗给出了建议(表4[45]。此外,抗感染治疗要及时,严重感染在诊断1 h内开始抗感染治疗,轻症感染在诊断后4 h内使用抗菌药物,并且建议在使用抗菌药物前采集病原学标本。

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表4

《热病:桑福德抗微生物治疗指南2018》中常见感染的抗菌药物选择[45]

表4

《热病:桑福德抗微生物治疗指南2018》中常见感染的抗菌药物选择[45]

感染 拟选抗菌药物 注意事项
社区获得性肺炎 无合并症或MRSA/铜绿假单胞菌感染风险:阿莫西林或多西环素 喹诺酮类抗菌药物18岁以下禁用
有合并症:呼吸喹诺酮类(左氧氟沙星、莫西沙星、吉米沙星)  
住院患者:β-内酰胺类+(阿奇霉素/克拉霉素或呼吸喹诺酮类)  
胆囊炎或胆道感染 首选方案:哌拉西林/他唑巴坦或氨苄西林/舒巴坦,如病情危重,选择亚胺培南或美罗培南 对于严重病例,抗菌药物仅是胆管充分引流的补充
备选方案:注射用三代头孢菌素+甲硝唑或氨曲南+甲硝唑  
胃肠道感染 阿奇霉素1 000 mg口服或500 mg口服、12 h 1次×3 d 注意监测肝肾功能;根据当地流行病学调整抗菌药物
泌尿系统感染 环丙沙星500 mg口服、每日2次或左氧氟沙星750 mg口服、每日1次,磷霉素可作为备选方案 喹诺酮类抗菌药物18岁以下禁用
细菌性脑膜炎 年龄<1个月:氨苄西林75~100 mg/kg静滴、6 h 1次+头孢噻肟75 mg/kg静滴、6 h 1次+庆大霉素2.5 mg/kg静滴、8 h 1次 用药后30 min内腰穿,若有局部神经系统体征,先予经验治疗,再进行头颅CT检查,然后腰穿
年龄1个月~50岁:头孢曲松2 g静滴、12 h 1次(儿童:美罗培南40 mg/kg静滴、8 h 1次)+地塞米松+万古霉素  
年龄>50岁或有严重基础疾病:美罗培南2 g静滴、8 h 1次+地塞米松+万古霉素  

注:MRSA为耐甲氧西林金黄色葡萄球菌

4.2.3 去除引起感染的病因:

对于有明确感染灶的创伤感染、化脓性胆囊炎、腹腔感染和泌尿系结石梗阻合并感染等,单纯抗菌药物治疗常常难以奏效,必须结合感染部位的局部处理,包括引流、清创和手术切除等。及时采取干预措施,也是防止脓毒症发生的一个重要环节。

4.3 发现及阻断"细胞因子风暴":

感染引起的局部炎症反应可促进新生组织置换损伤组织,起到使已发生的损伤弱化的作用,但当过度炎症反应出现时,则有可能引起SIRS,并导致脓毒症的发生。因此,及时发现"细胞因子风暴"并适时适量地调控炎症反应,对预防脓毒症的发生有重要意义,而且是预防脓毒症的核心。

4.3.1 细胞因子筛查与SIRS确定:

对脓毒症高危患者及可疑出现全身炎症反应的患者,应当进行细胞因子筛查,以确定SIRS的状态。目前启动和促进"细胞因子风暴"的因子并不明确,很多细胞因子都参与到脓毒症的反应之中。众多研究者认为,主要参与SIRS的促炎因子包括TNF-α、IL-1、IL-6、IL-12、巨噬细胞移动抑制因子(MIF)、sCD74和高迁移率族蛋白B1(HMGB1)等[46,47],参与代偿性抗炎症反应综合征(CARS)的抗炎细胞因子包括IL-4、IL-10、IL-35、IL-37、转化生长因子-β(TGF-β)和IL-13等[48]。有证据显示,当促炎因子明显升高,或出现炎症反应失衡时,即应当开始炎症调控。因此,对于脓毒症高危感染患者,应当定期进行细胞因子监测(2~4 h重复1次),及时发现可疑脓毒症患者。专家组已经组织针对脓毒症筛查的检测手段研发,并将用于PSCC的临床实践。目前医院普遍检测的细胞因子是IL-6。IL-6主要刺激参与免疫反应的细胞增殖和分化,并在机体的抗感染免疫反应中起重要作用。当炎症反应发生时,IL-6血清水平升高早于其他生物标志物,IL-6升高后诱导PCT和CRP生成。

4.3.2 炎症调控:

当发现细胞因子明显升高或炎症失衡的感染患者时,应当尽早进行炎症调控,使体内炎症反应恢复稳定平衡状态。

4.3.3 糖皮质激素:

大多数研究者认为使用糖皮质激素的适应证是脓毒性休克[49,50]。在无持续休克和死亡风险较低的脓毒症患者中并未发现糖皮质激素能够降低脓毒症的病死率。但也有研究者建议,在早期可适量使用糖皮质激素抑制炎性细胞因子的分泌和释放。目前已有足够的临床试验证据支持糖皮质激素可以调节脓毒症患者的固有免疫,促进炎症反应和器官衰竭问题的解决[51],并纳入了《中国脓毒症/脓毒性休克急诊治疗指南(2018)》[52]。但是重要的问题在于,在没有针对SIRS相关检测手段的情况下,我们无法明确使用激素的时机。

4.3.4 非激素类抗炎药物:

研究显示,乌司他丁对调节细胞因子具有明确的作用[53]。乌司他丁是一种能抑制多种蛋白水解酶活性的糖蛋白,是蛋白酶抑制剂,对胰蛋白酶等多种酶有抑制作用,具有稳定溶酶体膜、减少溶酶体酶释放、抑制心肌抑制因子(MDF)产生、清除氧自由基及抑制细胞因子释放的作用。在细胞因子升高的早期,使用小剂量的乌司他丁可以起到对细胞因子的调控作用;而在细胞因子失控阶段,促炎细胞因子与抗炎细胞因子失去平衡,对器官功能造成损伤,采用大剂量乌司他丁可以阻止患者脓毒症相关指标的进展。

4.3.5 中药制剂:

祖国传统医学在治疗理念上主张调节机体平衡、标本兼治的原则。目前很多研究证明,某些中药单体及复方制剂可以通过调控炎症和免疫反应、抑制血小板聚集、改善微循环等,起到预防脓毒症和改善脓毒症患者预后的作用。国家卫生健康委员会颁布的《新型冠状病毒肺炎诊疗方案(试行第七版)》也将中药治疗作为重要治疗手段之一列入方案中,针对不同程度的病症推荐了中草药和中成药,其中对重型和危重型新冠肺炎的中成药治疗给予了明确的指导意见,推荐了包括热毒宁注射液、血必净注射液和参附注射液等疗效相对明确的药物。虽然很多中成药物的有效成分及作用机制尚在研究中,但中药的总体疗效已经被临床证实。在脓毒症的应对上,热毒宁注射液对病毒及细菌都有一定的抑制和杀灭作用,也可通过拮抗内毒素与Toll样受体(TLR)结合,抑制核转录因子-κB(NF-κB)受体和丝裂素活化蛋白激酶(MAPK)信号通路,调控IL-1β、IL-6、TNF-α、IL-10、IL-13、细胞间黏附分子-1(ICAM-1)和内皮素-1(ET-1)等细胞因子表达,影响调节性T细胞的生物学功能,改善毛细血管和肺血管通透性,减少中性粒细胞和淋巴细胞渗出,发挥拮抗炎症反应及调节免疫紊乱的作用[54,55,56]。此类药物不影响抗菌药物对细菌的杀灭作用,不会导致感染的扩散。临床实践证实,适时适量使用热毒宁注射液可缩短疾病治疗时间和症状缓解时间,降低疾病进展为器官功能损害的概率,有效预防脓毒症的发生和疾病进展[57]。血必净注射液具有活血化瘀、舒通络脉和溃散毒邪的功效,通过抑制TNF-α、IL-1、IL-6、IL-8和IL-17等促炎因子及晚期炎性细胞因子HMGB1的表达,从而抑制TLR4-NF-κB通路的激活,发挥抗炎作用[58,59,60,61,62,63]。有证据证明,按照中医"既病防变"和"截断扭转"理论,在西医基础治疗的前提下,血必净注射液可防止脓毒症的发生发展,改善病情和临床结局[64]。此结论已得到多项临床研究证实:① 血必净注射液联合常规治疗脓毒症疗效与安全性的Meta分析结果显示,血必净注射液可以降低脓毒症患者28 d病死率、APACHEⅡ评分、体温、白细胞计数等指标,且无明显不良反应[64];② 一项纳入710例重症社区获得性肺炎合并脓毒症患者的随机对照临床研究显示,血必净注射液使28 d病死率降低了8.8%,肺炎严重指数(PSI)风险评级改善率提高了14.4%,机械通气时间缩短了5.5 d,ICU住院时间缩短了4 d。该研究结果在国际重症医学权威期刊Critical Care Medicine(CCM)发表[65]

4.3.6 炎性介质特异性抗体:

目前研究较成熟的炎性介质特异性抗体是TNF-α、IL-1抗体和抗内毒素脂多糖(LPS)抗体,结果提示上述抗体可通过诱导促炎细胞因子失活达到减轻脓毒症的效果[66];此外,有研究表明,己酮可可碱能够抑制单核/巨噬细胞与中性粒细胞的活化,从而抑制IL-1和TNF-α分泌[67]。但以上方法的临床效果和新型拮抗药物的研究仍需深入探讨才能进一步应用于临床。

4.3.7 免疫调理:

最近研究者发现炎症反应和免疫抑制共同贯穿于脓毒症发生发展过程中,而不是以往认为的先出现促炎反应后出现抗炎反应[68]。大量研究显示,在脓毒症发生过程中存在固有免疫和适应性免疫受到抑制的现象,表现为成熟粒细胞减少及成熟比例下降、单核/巨噬细胞"内毒素耐受"现象、树突细胞和淋巴细胞减少等[69]。因此,及时进行免疫调理是预防脓毒症的重要环节之一。目前常用方法包括:使用粒-巨噬细胞集落刺激因子(GM-GSF)和γ-干扰素(IFN-γ) 调节固有免疫反应,采用胸腺素α1和IL-7等调节适应性免疫功能[70]。但对于免疫调节剂的应用时机、剂量及具体药物尚未明确,无论对于脓毒症的预防还是脓毒症的治疗,其临床效果都有待进一步研究。

4.4 血管内皮保护与凝血调节:

血管内皮损伤和微血栓形成导致组织细胞的灌注下降,被认为是器官功能障碍的直接原因。这种内皮细胞损伤及微血栓形成引发弥散性血管内凝血(DIC)。引起DIC的机制包括促凝物质上调、抗凝物质下调及纤维蛋白溶解机制受损等。所以,及时监控凝血相关指标对于预防脓毒症的发生至关重要,特别是血小板计数(PLT)。此外,血浆D-二聚体也是临床常用的凝血功能参考指标,可反映凝血功能激活状态[71]

DIC不同进程中,其临床表现不同,主要包括出血、器官功能衰竭、休克及微血管病性溶血(表5)。在PSCC项目中,专家组认为应重点关注早期高凝现象并给予及时处理。

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表5

弥散性血管内凝血(DIC)的分期及临床表现

表5

弥散性血管内凝血(DIC)的分期及临床表现

分期 病理生理改变 临床表现
高凝期 血管内皮细胞损伤,凝血系统被启动,凝血酶增多,血液呈高凝状态,微循环血管中有血栓形成 实验室检查提示血浆凝血酶原时间(PT)可缩短;此为血管损伤的早期,临床上可没有典型的临床表现
消耗性低凝期 因血浆凝血因子和血小板大量消耗,血液呈低凝状态,易发生出血症状 此时有出血等临床表现和实验室检查异常
继发性纤溶期 因血管内凝血,纤溶系统被启动,造成继发性纤维蛋白溶解 出血症状更明显;实验室检查提示纤溶活性亢进
4.4.1 抗凝治疗:

脓毒症伴随的炎症反应通过破坏凝血系统,损耗内源性抗凝因子,使纤溶活性受到抑制,发生血栓,从而导致组织缺氧、器官功能受到损伤。炎性因子及炎性细胞破坏生理抗凝机制的同时,还会增加组织因子的释放,使外源性凝血因子被激活,加重炎症反应。而整个过程一直循环,导致抗凝物质持续消耗而衰竭,最终导致凝血机制出现异常,甚至可发展成多器官功能衰竭,造成死亡。针对感染患者采取适当的抗凝治疗是防止微血栓形成、预防脓毒症发生的措施之一。临床采用的药物主要是普通肝素和低分子肝素。

4.4.1.1 普通肝素:

普通肝素是有效的抗凝血药物,其应用及剂量因DIC临床类型和分期的不同而异。及时的肝素治疗可以改善周围组织灌注,有降低病死率的趋势,但也有可能增加严重出血的风险,并未被推荐为脓毒症并发DIC的常规用药。但重点在于如何早期发现高凝状态,只有处于高凝期的患者,凝血酶增多,微循环有血栓形成时,应用肝素抗凝治疗才能够取得满意效果。

4.4.1.2 低分子肝素:

低分子肝素作为由普通肝素解聚而成的抗凝药物,在用药后能迅速发挥抗血栓作用,且研究显示其同时可显著改善血流动力学[72],兼有生物利用度高、出血风险低和免疫活性及半衰期较长的特点。此外,运用低分子肝素治疗可能发生脓毒症的感染患者,可抑制异常的凝血功能,减少血小板的异常损耗,阻止氧自由基损伤,对微循环存在明显的改善作用。在抑制病理性凝血系统激活的同时,低分子肝素还能有效减少严重出血的发生[73]

4.4.2 替代治疗:

替代治疗取决于是否因某种血液成分减少而导致的出血或极高的出血风险。患者如出现以下情况时,可考虑使用血液制品替代治疗。

4.4.2.1 血小板:

对于活动性出血患者来说,PLT需要达到50×109/L以上。其他输入血小板的指征包括:① PLT<10×109/L而无明显出血征象;② PLT<20×109/L而存在高出血风险。

4.4.2.2 凝血因子:

① 在没有出血或侵入性操作计划时,不建议使用新鲜冰冻血浆纠正凝血功能异常;② 伴有凝血酶原时间(PT)或活化部分凝血活酶时间(APTT)延长>1.5倍,或纤维蛋白原(FIB)<1.5 g/L,可静脉输注新鲜冰冻血浆15~30 mL/kg;③ 因液体负荷过多导致DIC患者出血时,可使用浓缩凝血因子。DIC患者血浆FIB至少应维持在1.0~1.5 g/L。

4.5 循环容量支持:

"拯救脓毒症"的重要手段之一是液体复苏,"复苏"的前提是出现明确的有效循环血容量下降或休克。PSCC旨在早期预防和阻断脓毒症的发生,因此本共识的关注点在出现休克之前。早期的内皮细胞损伤和毛细血管渗漏可以造成隐形的容量不足,此时需要我们尽快识别并给予液体补充支持,支持的时机越早越好。因为液体的有效补充既可以保证组织灌注,也可以防止血液高凝状态和微血栓形成。要在脓毒症前期就开始EGDT的液体支持,并且要尽快将qSOFA及NEWS评分降低。虽然2014至2015年在New England Journal of Medicine发表的感染性休克早期程序化治疗研究(ProCESS研究)、脓毒症程序化治疗研究(ProMISE研究)及澳大利亚脓毒症复苏评估研究(ARISE研究)对传统EGDT手段的临床应用得出了阴性结果,带来了巨大挑战,认为EGDT无论对60 d或90 d院内病死率,还是患者远期病死率及器官支持需要等次要终点的改善均没有优势[74,75,76]。本专家组认为这种EGDT优势的丧失并非观念上的错误,而是缘于患者的选择、时机的掌握,以及目标的制定。对于急诊科而言,患者能够接受治疗的时间远远早于ICU。因此,专家们认为早期积极的液体支持对急诊科防止脓毒症发生仍然是重要的治疗策略之一。

多数研究者认为在选择补液种类时,理论上首先选择晶体液,特别是与细胞外液离子成分、酸碱度和电荷等影响内环境的因素相近的晶体液。有专家认为,由于晶体液相对分子质量小,易于通过毛细血管渗漏至组织间隙,不作为首选[77,78]。补液量以维持大循环稳定(心率、平均动脉压和中心静脉压在正常范围)及动脉血乳酸正常为标准。

4.6 器官功能保护
4.6.1 提高预防意识:

从感染到脓毒症,再从脓毒症初期到器官功能不全,最终发展为多器官功能衰竭,是一个连续性过程[79]。急诊医生需要准确认识脓毒症引起MODS的过程,尽早排查高危患者,确定感染程度,发现和控制"炎症风暴",进行呼吸循环支持,尽早实施器官功能保护。对于已有MODS迹象的患者,应尽快采取措施,避免器官功能不全进一步加重,也避免器官损伤数目的进一步增加。

4.6.2 提高整体观念:

人是一个整体,生理状态下各器官相互作用,人体功能处于稳定状态。一方面,当存在器官功能不全时,人体的平衡将被打破。若无法尽早调整这一失衡,将可能导致原有器官损伤进一步加重并逐渐出现其他器官功能不全。另一方面,任何干预措施均有可能打破原有的平衡,造成后续出现一系列器官损伤。因此,在对患者诊治过程中应强调"整体观念""既病防传",既要对损伤器官进行支持,同时也应兼顾正常器官的保护,维持器官功能的平衡。治疗上在器官支持的同时,应兼顾原发病和炎症反应等多方面治疗,力争使机体尽早达到新的稳态。

4.6.3 动态评估:

综合检测及动态评估器官功能对于早期发现器官损伤,评估MODS治疗的疗效至关重要。这其中,应重视患者生命体征、尿量、肢体末梢及皮肤黏膜等临床重要参数的改变,亦需采用一些无创和有创的客观监测手段。呼吸循环监测是急重症患者诊治的核心,而对于疑似脓毒症患者,感染和炎症等指标的监测亦尤为重要。在临床上可以动态监测NEWS评分、SOFA评分及MODS严重度评分等,获取不同系统的监测指标,从不同角度进行综合分析,有利于早期预见SIRS和MODS,有利于脓毒症的阻断。

4.6.4 早期干预:

脓毒症的早期干预重点在于对人的调整,进而减少过度反应对器官功能的损害,在这方面,应该充分发挥中医中药的治疗作用。脓毒症属于祖国医学"外感热病""脱证""血证""暴喘""神昏""脏竭症"等范畴,其造成机体损害的主要原因是素体正气不足,外邪入侵,入里化热,耗气伤阴;正气虚弱,毒邪内陷,络脉气血运行不畅,导致毒热、瘀血、痰浊内阻,瘀阻脉络,进而令各脏器受邪而损伤。早期预防和阻断脓毒症的思路与《黄帝内经》提出的"治未病"理论不谋而合。在这类疾病的治疗上,临床多分为"四证四法",即毒热证与清热解毒法、腑气不通证与通里攻下法、血瘀证与活血化瘀法、急性虚证与扶正固本法。

4.6.4.1 中医辨证施治:

① 毒热证:症见高热持续不退、烦躁、神昏、恶心呕吐、舌质红绛、脉数等。临床常用清热解毒的中药治疗,如热毒宁注射液、清开灵注射液、醒脑静注射液和安宫牛黄丸等[80]。② 腑气不通证:症见西医学肠梗阻的表现,包括腹胀、呕吐、无排便排气、肠鸣音减弱或消失等。有研究者认为,肠道功能障碍引起的细菌移位是脓毒症发展的启动因素之一[81,82],及时恢复肠道功能对防止脓毒症发生至关重要。代表方大承气汤能显著降低MODS患者病死率,用于脓毒症的治疗可减少炎性介质的产生、抑制炎症反应、调节免疫功能,同时还具有抗菌作用[83]。③ 血瘀证:症见高热,或神昏,或疼痛状如针刺刀割、痛处固定不移,常于夜间加重,肿块,出血,舌质紫暗或有瘀斑,脉沉迟或沉弦等。常予以红花、赤芍、川芎、当归、丹参等活血化瘀中药及血府逐瘀汤等方药治疗;中成药以复方丹参注射液和血必净注射液为代表[84,85]。④ 急性虚证:阴脱症见意识恍惚或烦躁不安、面色潮红、两眶内陷、皮肤皱褶、身热心烦、口渴欲饮、少尿或无尿、舌红干燥、脉细数等,与西医学的休克表现相似;临床常用生脉注射液[86]或参麦注射液以益气养阴固脱。阳脱症见冷汗淋漓、四肢逆冷、忽尔昏愦、面赤唇紫、口开目闭、手撒遗尿、舌淡或紫、脉微欲绝或散大无根等;临床常用参附注射液以益气温阳固脱。阴阳俱脱而症见急病重病,突然大汗不止或汗出如油,精神疲惫不支,声短息微,遗尿失禁,舌卷少津,脉微细欲绝或脉大无力等;临床上可联用生脉注射液、参麦注射液及参附注射液。

4.6.4.2 单味药:

① 大黄:单味生大黄具有促进胃肠蠕动、保护肠道黏膜、促进内毒素排出、减少细菌和毒素移位及抗炎抑菌作用,对MODS有显著的预防治疗作用,能提高累及4个以上器官MODS的存活率[87,88]。② 丹参:丹参的水溶性成分具有良好的抗血栓形成和改善循环作用,从而减轻器官功能损害。体外实验表明,丹参有拮抗LPS作用,其对肺的保护作用可能是通过抑制或减少TNF-α等细胞因子在血及肺组织中的表达,减轻了由此介导的肺部急性炎症反应[89]。③ 人参:有实验研究证实,人参多种有效成分对内毒素结构的直接破坏作用不明显,但对其引起的发热、白细胞骤降及休克、死亡均有较强的拮抗和防护效果[90]

5 结 语

脓毒症起始于感染,经过"细胞因子风暴"、毛细血管内皮损伤、毛细血管渗漏、微血栓形成和组织灌注下降,最终导致器官功能损害。多年来,医学界已在器官功能保护和替代等方面积累了丰富的实践经验,但脓毒症救治效果仍有待提高。目前在发生感染后至走向脓毒症的过程中所做的工作还很有限,分析其原因:一是病理生理复杂、临床难点多;二是对脓毒症预防认识的局限性。急诊医学作为一个接触患者最早的临床专科,其工作特点与优势就在于对疾病的早期诊断、危险分层、合理分流及科学救治(图1)。通过早期干预疾病的病理生理发展进程,实现脓毒症的阻断,进而降低脓毒症的发病率。此外,通过对于围脓毒症期患者的合理诊治,降低脓毒症的病死率。当然,这项工作刚刚起步,MODS还面临着众多挑战,如感染性疾病的复杂性、易感人群的复杂性、"细胞因子风暴"的启动和发展的复杂性等。脓毒症的预防与阻断工作还有赖于所有临床工作者和基础研究人员的共同努力,可以相信这是一个好的开端。PSCC工作的不断深入一定能够取得令人满意的成果,惠及学科,惠及社会,惠及百姓。

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图1
急诊脓毒症预防流程图

注:SOFA为序贯器官衰竭评分,qSOFA为快速序贯器官衰竭评分,NEWS为英国国家早期预警评分,OMI为吸氧(O)、监护(M)、建立静脉通路及输液(I),EICU为急诊重症监护病房

图1
急诊脓毒症预防流程图

执笔专家:王仲、魏捷、朱华栋、曹钰

共识撰写专家(以姓氏拼音为序):曹钰(四川大学华西医院),柴艳芬(天津医科大学总医院),晁彦公(清华大学第一附属医院),陈飙(华中科技大学同济医学院附属协和医院),陈芳(《实用休克杂志》编辑部),陈锋(福建省立医院,福建医科大学省立临床医学院),陈玉国(山东大学齐鲁医院),崔巍(中国医学科学院肿瘤医院),董士民(河北医科大学第三医院),方邦江(上海中医药大学附属龙华医院),韩晓彤(湖南省人民医院),何小军(《中华急诊医学杂志》编辑部),李银平(《中华危重病急救医学》杂志社),林兆奋(海军军医大学附属长征医院),刘笑然(海南医学院第一附属医院),卢中秋(温州医科大学附属第一医院),吕传柱(急救与创伤研究教育部重点实验室,中国医学科学院海岛急救医学创新单元,海南医学院),马岳峰(《中华急诊医学杂志》编辑部),米玉红(首都医科大学附属北京安贞医院),聂时南(解放军东部战区总医院),裴俏(《中国急救医学》编辑部),钱传云(昆明医科大学第一附属医院),秦历杰(河南省人民医院),商德亚(山东省立医院),司君利(青岛市市立医院),童朝阳(复旦大学附属中山医院),王利君(清华大学附属北京清华长庚医院),王振杰(蚌埠医学院第一附属医院),王仲(清华大学附属北京清华长庚医院,清华大学临床医学院),魏捷(武汉大学人民医院),徐峰(山东大学齐鲁医院),许铁(徐州医科大学附属医院),姚咏明(解放军总医院第四医学中心),于学忠(北京协和医院),曾红科〔广东省人民医院(广东省医学科学院)〕,张国强(中日友好医院),张泓(安徽医科大学第一附属医院),张劲松(南京医科大学第一附属医院),张茂(浙江大学医学院附属第二医院),张新超(北京医院),赵敏(中国医科大学附属盛京医院),赵晓东(解放军总医院第四医学中心),赵志刚(北京天坛医院),郑波(北京大学第一医院),朱华栋(北京协和医院),祝益民(湖南省急救医学研究所急危重症代谢组学湖南省重点实验室)

利益冲突

利益冲突 所有作者均声明不存在利益冲突

参考文献
[1]
SingerM, DeutschmanCS, SeymourCW, et al. The third international consensus definitions for sepsis and septic shock (Sepsis-3) [J]. JAMA, 2016, 315( 8): 801- 810. DOI: 10.1001/jama.2016.0287.
[2]
FleischmannC, ScheragA, AdhikariNK, et al. Assessment of global incidence and mortality of hospital-treated sepsis. Current estimates and limitations [J]. Am J Respir Crit Care Med, 2016, 193( 3): 259- 272. DOI: 10.1164/rccm.201504-0781OC.
[3]
AdhikariNK, FowlerRA, BhagwanjeeS, et al. Critical care and the global burden of critical illness in adults [J]. Lancet, 2010, 376( 9749): 1339- 1346. DOI: 10.1016/S0140-6736(10)60446-1.
[4]
XieJ, WangH, KangY, et al. The epidemiology of sepsis in Chinese ICUs: a national cross-sectional survey [J]. Crit Care Med, 2020, 48( 3): e209- e218. DOI: 10.1097/CCM.0000000000004155.
[5]
KaukonenKM, BaileyM, SuzukiS, et al. Mortality related to severe sepsis and septic shock among critically ill patients in Australia and New Zealand, 2000-2012 [J]. JAMA, 2014, 311( 13): 1308- 1316. DOI: 10.1001/jama.2014.2637.
[6]
MartinGS, ManninoDM, EatonS, et al. The epidemiology of sepsis in the United States from 1979 through 2000 [J]. N Engl J Med, 2003, 348( 16): 1546- 1554. DOI: 10.1056/NEJMoa022139.
[7]
WengL, ZengXY, YinP, et al. Sepsis-related mortality in China: a descriptive analysis [J]. Intensive Care Med, 2018, 44( 7): 1071- 1080. DOI: 10.1007/s00134-018-5203-z.
[8]
梁建峰李智勇董海山,. 影响ICU脓毒症患者预后的多因素分析[J]. 中国急救医学, 2018, 38( 1): 46- 52. DOI: 10.3969/j.issn.1002-1949.2018.01.011.
LiangJF, LiZY, DongHS, et al. Multivariate analysis of prognosis of sepsis patients in ICU [J]. Chin J Crit Care Med, 2018, 38(1): 46-52. DOI: 10.3969/j.issn.1002-1949.2018.01.011.
[9]
孙树印刘云海. 脓毒症的治疗进展[J]. 医学综述, 2013, 19( 3): 499- 501. DOI: 10.3969/j.issn.1006-2084.2013.03.039.
SunSY, LiuYH. Progress in diagnosis and treatment of sepsis [J]. Med Recap, 2013, 19(3): 499-501. DOI: 10.3969/j.issn.1006-2084.2013.03.039.
[10]
GrandeE, GrippoF, FrovaL, et al. The increase of sepsis-related mortality in Italy: a nationwide study, 2003-2015 [J]. Eur J Clin Microbiol Infect Dis, 2019, 38( 9): 1701- 1708. DOI: 10.1007/s10096-019-03601-3.
[11]
ReinhartK, DanielsR, KissoonN, et al. Recognizing sepsis as a global health priority: a WHO resolution [J]. N Engl J Med, 2017, 377( 5): 414- 417. DOI: 10.1056/NEJMp1707170.
[12]
沈洪刘中民. 急诊与灾难医学[M]. 北京: 人民卫生出版社2013.
ShenH, LiuZM. Emergency and disaster medicine [M]. Beijing: People's Health Press, 2013.
[13]
中国医药教育协会感染疾病专业委员会. 感染相关生物标志物临床意义解读专家共识[J]. 中华结核和呼吸杂志, 2017, 40( 4): 243- 257. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1001-0939.2017.04.002.
Professional Committee of Infectious Diseases of China Medical Education Association. Expert consensus on the clinical significance of infection related biomarkers [J]. Chin J Tubere Respir Dis, 2017, 40(4): 243-257. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1001-0939.2017.04.002.
[14]
降钙素原急诊临床应用专家共识组. 降钙素原(PCT)急诊临床应用的专家共识[J]. 中华急诊医学杂志, 2012, 21( 9): 944- 951. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1671-0282.2012.09.005.
Expert Consensus Group on Primary Emergency Clinical Application of Procalcitonin. Expert consensus on emergency clinical application of procalcitonin (PCT) [J]. Chin J Emerg Med, 2012, 21(9): 944-951. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1671-0282.2012.09.005.
[15]
徐冬梅季孝周雪芬,. 白细胞介素-6、血清淀粉样A蛋白、唾液酸、HBP在发热患者中的诊断价值[J]. 中国卫生检验杂志, 2019, 29( 24): 3027- 3029.
XuDM, JiX, ZhouXF, et al. Diagnostic value of interleukin-6, serum amyloid A protein, sialic acid and HBP in patients with fever [J]. Chin J Health Lab Technol, 2019, 29(24): 3027-3029.
[16]
吴智慧郑洁黄伟,. 血清白细胞介素-6对感染相关脓毒症患者病情的评估效果[J]. 中华医院感染学杂志, 2019, 29( 17): 2580- 2583. DOI: 10.11816/cn.ni.2019-183939.
WuZH, ZhengJ, HuangW, et al. Effect of serum IL-6 on evaluation of illness condition of patients with infection-related sepsis [J]. Chin J Nosocomiol, 2019, 29(17): 2580-2583. DOI: 10.11816/cn.ni.2019-183939.
[17]
JohanssonJ, BrattströmO, SjöbergF, et al. Heparin-binding protein (HBP): an early marker of respiratory failure after trauma? [J]. Acta Anaesthesiol Scand, 2013, 57( 5): 580- 586. DOI: 10.1111/aas.12070.
[18]
邹艳花杨录波邱淑妍,. 肝素结合蛋白在脓毒症诊断及分级中的应用[J]. 深圳中西医结合杂志, 2018, 28( 20): 58- 59. DOI: 10.16458/j.cnki.1007-0893.2018.20.029.
ZouYH, YangLB, QiuSY, et al. Application of heparin binding protein in diagnosis and grading of sepsis [J]. Shenzhen J Integr Tradit Chin West Med, 2018, 28(20): 58-59. DOI: 10.16458/j.cnki.1007-0893.2018.20.029.
[19]
LuH, WenD, WangX, et al. Host genetic variants in sepsis risk: a field synopsis and meta-analysis [J]. Crit Care, 2019, 23( 1): 26. DOI: 10.1186/s13054-019-2313-0.
[20]
ChengB, XieG, YaoS, et al. Epidemiology of severe sepsis in critically ill surgical patients in ten university hospitals in China [J]. Crit Care Med, 2007, 35( 11): 2538- 2546. DOI: 10.1097/01.CCM.0000284492.30800.00.
[21]
DuB, AnY, KangY, et al. Characteristics of critically ill patients in ICUs in mainland China [J]. Crit Care Med, 2013, 41( 1): 84- 92. DOI: 10.1097/CCM.0b013e31826a4082.
[22]
ZhouJ, QianC, ZhaoM, et al. Epidemiology and outcome of severe sepsis and septic shock in intensive care units in mainland China [J]. PLoS One, 2014, 9( 9): e107181. DOI: 10.1371/journal.pone.0107181.
[23]
HeXL, LiaoXL, XieZC, et al. Pulmonary infection is an independent risk factor for long-term mortality and quality of life for sepsis patients [J]. Biomed Res Int, 2016, 2016: 4213712. DOI: 10.1155/2016/4213712.
[24]
AnnaneD, BellissantE, CavaillonJM. Septic shock [J]. Lancet, 2005, 365( 9453): 63- 78. DOI: 10.1016/S0140-6736(04)17667-8.
[25]
WalkeyAJ, WienerRS, LindenauerPK. Utilization patterns and outcomes associated with central venous catheter in septic shock: a population-based study [J]. Crit Care Med, 2013, 41( 6): 1450- 1457. DOI: 10.1097/CCM.0b013e31827caa89.
[26]
VincentJL, SakrY, SprungCL, et al. Sepsis in European intensive care units: results of the SOAP study [J]. Crit Care Med, 2006, 34( 2): 344- 353. DOI: 10.1097/01.ccm.0000194725.48928.3a.
[27]
RamachandranG. Gram-positive and gram-negative bacterial toxins in sepsis: a brief review [J]. Virulence, 2014, 5( 1): 213- 218. DOI: 10.4161/viru.27024.
[28]
AngusDC, KelleyMA, SchmitzRJ, et al. Caring for the critically ill patient. Current and projected workforce requirements for care of the critically ill and patients with pulmonary disease: can we meet the requirements of an aging population? [J]. JAMA, 2000, 284( 21): 2762- 2770. DOI: 10.1001/jama.284.21.2762.
[29]
刘毅宋诗铎王洪霞. ICU医院感染相关脓毒症病原菌分布及耐药性分析[J]. 中华医院感染学杂志, 2010, 20( 3): 421- 423.
LiuY, SongSD, WangHX. Pathogenic bacteria distribution and drug resistance of hospital infection-related sepsis in ICU [J]. Chin J Nosocomiol, 2010, 20(3): 421-423.
[30]
HuangC, WangY, LiX, et al. Clinical features of patients infected with 2019 novel coronavirus in Wuhan, China [J]. Lancet, 2020, 395( 10223): 497- 506. DOI: 10.1016/S0140-6736(20)30183-5.
[31]
ZieglerEJ, FisherCJ, SprungCL, et al. Treatment of gram-negative bacteremia and septic shock with HA-1A human monoclonal antibody against endotoxin. A randomized, double-blind, placebo-controlled trial. The HA-1A Sepsis Study Group [J]. N Engl J Med, 1991, 324( 7): 429- 436. DOI: 10.1056/NEJM199102143240701.
[32]
VincentJL, BihariDJ, SuterPM, et al. The prevalence of nosocomial infection in intensive care units in Europe. Results of the European prevalence of infection in intensive care (EPIC) study. EPIC International Advisory Committee [J]. JAMA, 1995, 274( 8): 639- 644.
[33]
VincentJL, MorenoR, TakalaJ, et al. The SOFA (sepsis-related organ failure assessment) score to describe organ dysfunction/failure. On behalf of the Working Group on Sepsis-Related Problems of the European Society of Intensive Care Medicine [J]. Intensive Care Med, 1996, 22( 7): 707- 710. DOI: 10.1007/BF01709751.
[34]
FerreiraFL, BotaDP, BrossA, et al. Serial evaluation of the SOFA score to predict outcome in critically ill patients [J]. JAMA, 2001, 286( 14): 1754- 1758. DOI: 10.1001/jama.286.14.1754.
[35]
VincentJL, de MendonçaA, CantraineF, et al. Use of the SOFA score to assess the incidence of organ dysfunction/failure in intensive care units: results of a multicenter, prospective study. Working group on "sepsis-related problems" of the European Society of Intensive Care Medicine [J]. Crit Care Med, 1998, 26( 11): 1793- 1800. DOI: 10.1097/00003246-199811000-00016.
[36]
FreundY, LemachattiN, KrastinovaE, et al. Prognostic accuracy of Sepsis-3 criteria for in-hospital mortality among patients with suspected infection presenting to the emergency department [J]. JAMA, 2017, 317( 3): 301- 308. DOI: 10.1001/jama.2016.20329.
[37]
FernandoSM, AlexandreT, MonicaT, et al. Prognostic accuracy of the quick sequential organ failure assessment for mortality in patients with suspected infection [J]. Ann Intern Med, 2018, 169( 4): 264- 265. DOI: 10.7326/L18-0291.
[38]
HaydarS, SpanierM, WeemsP, et al. Comparison of qSOFA score and SIRS criteria as screening mechanisms for emergency department sepsis [J]. Am J Emerg Med, 2017, 35( 11): 1730- 1733. DOI: 10.1016/j.ajem.2017.07.001.
[39]
HwangSY, JoIJ, LeeSU, et al. Low accuracy of positive qSOFA criteria for predicting 28-day mortality in critically ill septic patients during the early period after emergency department presentation [J]. Ann Emerg Med, 2018, 71( 1): 1-9. e2. DOI: 10.1016/j.annemergmed.2017.05.022.
[40]
ChurpekMM, SnyderA, HanX, et al. Quick sepsis-related organ failure assessment, systemic inflammatory response syndrome, and early warning scores for detecting clinical deterioration in infected patients outside the intensive care unit [J]. Am J Respir Crit Care Med, 2017, 195( 7): 906- 911. DOI: 10.1164/rccm.201604-0854OC.
[41]
GouldenR, HoyleMC, MonisJ, et al. qSOFA, SIRS and NEWS for predicting inhospital mortality and ICU admission in emergency admissions treated as sepsis [J]. Emerg Med J, 2018, 35( 6): 345- 349. DOI: 10.1136/emermed-2017-207120.
[42]
Royal College of Physician. National early warning score: standardising the assessment of acute-illness severity in the NHS. Report of a working party [R]. London: Royal College of Physicians, 2012.
[43]
王春源曹涛勤俭,. 英国国家早期预警评分对急诊老年严重脓毒症及脓毒症休克患者预后的评估价值[J]. 实用临床医药杂志, 2017, 21( 15): 1- 4. DOI: 10.7619/jcmp.201715001.
WangCY, CaoT, QinJ, et al. Value of England national early warning score in evaluating prognosis of elderly patients with severe sepsis and septic shock in emergency department [J]. J Clin Med Pract, 2017, 21(15): 1-4. DOI: 10.7619/jcmp.201715001.
[44]
朱逸敏张文宏. 二代测序在脓毒血症患者病原学诊断中的应用[J]. 微生物与感染, 2018, 13( 2): 97- 101. DOI: 10.3969/j.issn.1673-6184.2018.02.006.
ZhuYM, ZhangWH. Clinical application of next-generation sequencing in etiological diagnosis of sepsis [J]. J Microbes Infections, 2018, 13(2): 97-101. DOI: 10.3969/j.issn.1673-6184.2018.02.006.
[45]
GilbertDN, ChambersHF, EllopoulosGM, et al. 热病:桑德福抗微生物治疗指南[M]. 范洪伟,王焕玲,周宝桐,, . 48版. 北京: 中国协和医科大学出版社, 2019.
GilbertDN, ChambersHF, EllopoulosGM, et al. The Sanford guide to antimicrobial therapy 2018 [M]. FanHW, WangHL, ZhouBT, et al, trans. 48th ed. Beijing: Peking Union Medical College Press, 2019.
[46]
JekarlDW, KimKS, LeeS, et al. Cytokine and molecular networks in sepsis cases: a network biology approach [J]. Eur Cytokine Netw, 2018, 29( 3): 103- 111. DOI: 10.1684/ecn.2018.0414.
[47]
夏照帆伍国胜. 浅谈细胞因子在脓毒症中的作用及临床应用现状[J]. 中华烧伤杂志, 2019, 35( 1): 3- 7. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1009-2587.2019.01.002.
XiaZF, WuGS. Role of cytokines in sepsis and its current situation of clinical application [J]. Chin J Burns, 2019, 35(1): 3-7. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1009-2587.2019.01.002.
[48]
姚咏明张艳敏. 脓毒症发病机制最新认识[J]. 医学研究生学报, 2017, 30( 7): 678- 683. DOI: 10.16571/j.cnki.1008-8199.2017.07.002.
YaoYM, ZhangYM. Updated insights into the pathogenesis of sepsis [J]. J Med Postgra, 2017, 30(7): 678-683. DOI: 10.16571/j.cnki.1008-8199.2017.07.002.
[49]
BatzofinBM, SprungCL, WeissYG. The use of steroids in the treatment of severe sepsis and septic shock [J]. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab, 2011, 25( 5): 735- 743. DOI: 10.1016/j.beem.2011.05.006.
[50]
KalilAC, SunJ. Low-dose steroids for septic shock and severe sepsis: the use of Bayesian statistics to resolve clinical trial controversies [J]. Intensive Care Med, 2011, 37( 3): 420- 429. DOI: 10.1007/s00134-010-2121-0.
[51]
HemingN, SivanandamoorthyS, MengP, et al. Immune effects of corticosteroids in sepsis [J]. Front Immunol, 2018, 9: 1736. DOI: 10.3389/fimmu.2018.01736.
[52]
曹钰柴艳芬邓颖,. 中国脓毒症/脓毒性休克急诊治疗指南(2018)[J]. 临床急诊杂志, 2018, 19( 9): 567- 588. DOI: 10.13201/j.issn.1009-5918.2018.09.001.
CaoY, ChaiYF, DengY, et al. Guidelines for emergency treatment of sepsis/septic shock in China (2018) [J]. J Clin Emerg, 2018, 19(9): 567-588. DOI: 10.13201/j.issn.1009-5918.2018.09.001.
[53]
ParkKH, LeeKH, KimH, et al. The anti-inflammatory effects of ulinastatin in trauma patients with hemorrhagic shock [J]. J Korean Med Sci, 2010, 25( 1): 128- 134. DOI: 10.3346/jkms.2010.25.1.128.
[54]
常秀娟张帅江益平,. 从细胞因子风暴探讨热毒宁注射液抗大鼠急性肺损伤作用机制[J]. 中草药, 2015, 46( 2): 236- 239. DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2015.02.016.
ChangXJ, ZhangS, JiangYP, et al. Mechanism of Reduning injection on anti-acute lung injury in rats based on cytokine storm [J]. Chin Tradit Herbal Drugs, 2015, 46(2): 236-239. DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2015.02.016.
[55]
王开富萧伟王振中,. 热毒宁注射液的解热抗炎作用及其机制[J]. 中国医院药学杂志, 2013, 33( 23): 1918- 1922.
WangKF, XiaoW, WangZZ, et al. Influence of Reduning injection on the inflammatory mediums of IL-1, IL-6, ET-1 and PGE2 [J]. Chin J Hosp Pharm, 2013, 33(23): 1918-1922.
[56]
TangLP, XiaoW, LiYF, et al. Anti-inflammatory effects of Reduning injection on lipopolysaccharide-induced acute lung injury of rats [J]. Chin J Integr Med, 2014, 20( 8): 591- 599. DOI: 10.1007/s11655-014-1758-x.
[57]
赵应华. 热毒宁注射液在儿科临床的应用[J/OL]. 中华妇幼临床医学杂志(电子版), 2012, 8( 3): 383- 385. DOI: 10.3877/cma.j.issn.1673-5250.2012.03.050.
ZhaoYH. Application of reduning injection in clinical pediatrics [J/OL]. Chin J Obst Gynecol Pediatr (Electronic Edition), 2012, 8(3): 383-385. DOI: 10.3877/cma.j.issn.1673-5250.2012.03.050.
[58]
欧娅黄耀星苏伟,. 血必净注射液对SAP大鼠TLR4信号通路介导肠黏膜屏障功能障碍的影响[J]. 广州医药, 2019, 50( 3): 1- 5. DOI: 10.3969/j.issn.1000-8535.2019.03.001.
OuY, HuangYX, SuW, et al. Mechanisms of Xuebijing injection in interventing intestinal mucosal barrier dysfunction in SAP rats [J]. Guangzhou Med J, 2019, 50(3): 1-5. DOI: 10.3969/j.issn.1000-8535.2019.03.001.
[59]
卢文静李伟哲王鑫,. 百草枯中毒大鼠肺组织中TNF-α、TGF-β1、IL-13的表达及血必净注射液干预的作用[J]. 现代中西医结合杂志, 2019, 28( 32): 3567- 3571. DOI: 10.3969/j.issn.1008-8849.2019.32.008.
LuWJ, LiWZ, WangX, et al. Expression of TNF-α, TGF-β1, IL-13 in lung tissue of rats with paraquat poisoning and intervention of Xuebijing injection [J]. Mod J Integr Tradit Chin West Med, 2019, 28(32): 3567-3571. DOI: 10.3969/j.issn.1008-8849.2019.32.008.
[60]
孙梦杰屠亚茹欧阳慧子,. 血必净注射液及其药代标示物对脓毒症大鼠炎性因子TNF-α、IL-1、IL-6、IL-8和IL-10表达的影响[J]. 天津中医药大学学报, 2018, 37( 1): 13- 15. DOI: 10.11656/j.issn.1673-9043.2018.01.04.
SunMJ, TuYR, OuyangHZ, et al. Effect of treatment with Xuebijing injection and its pharmacokinetics markers on serum inflammatory factor indude TNF-α, IL-1, IL-6, IL-8 and IL-10 in rats with sepsis [J]. J Tianjin Univ Tradit Chin Med, 2018, 37(1): 13-15. DOI: 10.11656/j.issn.1673-9043.2018.01.04.
[61]
赵士兵汪华学郑胜永,. 脓毒症大鼠血清高迁移率族蛋白B1的变化规律及血必净的干预效果研究[J]. 中国中西医结合杂志, 2014, 34( 6): 739- 744. DOI: 10.7661/CJIM.2014.06.0739.
ZhaoSB, WangHX, ZhengSY, et al. Study on the changes of serum high mobility group protein B1 in sepsis rats and the intervention effect of Xuebijing [J]. Chin J Integr Tradit Western Med, 2014, 34(6): 739-744. DOI: 10.7661/CJIM.2014.06.0739.
[62]
赵露茜朱国栋张靖轩,. 脓毒症大鼠IL-6、TNF-α、TH水平和D2活性变化及血必净注射液的干预研究[J]. 实用医学杂志, 2018, 34( 16): 2670- 2674. DOI: 10.3969/j.issn.1006-5725.2018.16.009.
ZhaoLQ, ZhuGD, ZhangJX, et al. The changes and the intervening effects of Xuebijing on cell factors , TH and type 2 deiodinase levels in septic rats [J]. J Pract Med, 2018, 34(16): 2670-2674. DOI: 10.3969/j.issn.1006-5725.2018.16.009.
[63]
WangQ, WuX, TongX, et al. Xuebijing ameliorates sepsis-induced lung injury by downregulating HMGB1 and RAGE expressions in mice [J]. Evid Based Complement Alternat Med, 2015, 2015: 860259. DOI: 10.1155/2015/860259.
[64]
LiC, WangP, ZhangL, et al. Efficacy and safety of Xuebijing injection (a Chinese patent) for sepsis: a meta-analysis of randomized controlled trials [J]. J Ethnopharmacol, 2018, 224: 512- 521. DOI: 10.1016/j.jep.2018.05.043.
[65]
SongY, YaoC, YaoY, et al. Xuebijing injection versus placebo for critically ill patients with severe community-acquired pneumonia: a randomized controlled trial [J]. Crit Care Med, 2019, 47( 9): e735- e743. DOI: 10.1097/CCM.0000000000003842.
[66]
王硕李丽娜齐文升,. 炎症反应调控与脓毒症防治方法进展[J]. 现代仪器与医疗, 2018, 24( 5): 26- 28. DOI: 10.11876/mimt201805012.
WangS, LiLN, QiWS, et al. Progress of inflammatory response regulation and sepsis prevention and treatment [J]. Modern Instrum Med Treat, 2018, 24(5): 26-28. DOI: 10.11876/mimt201805012.
[67]
MathiasB, DelmasAL, Ozrazgat-BaslantiT, et al. Human myeloid-derived suppressor cells are associated with chronic immune suppression after severe sepsis/septic shock [J]. Ann Surg, 2017, 265( 4): 827- 834. DOI: 10.1097/SLA.0000000000001783.
[68]
Shankar-HariM, HarrisonDA, RubenfeldGD, et al. Epidemiology of sepsis and septic shock in critical care units: comparison between sepsis-2 and sepsis-3 populations using a national critical care database [J]. Br J Anaesth, 2017, 119( 4): 626- 636. DOI: 10.1093/bja/aex234.
[69]
ThomasH. Sepsis: bile acids promote inflammation in cholestasis-associated sepsis [J]. Nat Rev Gastroenterol Hepatol, 2017, 14( 6): 324- 325. DOI: 10.1038/nrgastro.2017.55.
[70]
黄鑫波刘端绘. 脓毒症免疫抑制监测与免疫治疗的研究进展[J]. 广西医学, 2020, 42( 4): 486- 490. DOI: 10.11675/j.issn.0253-4304.2020.04.27.
HuangXB, LiuDH. Progress in immunosuppressive monitoring and immunotherapy of sepsis [J]. Guangxi Med J, 2020, 42(4): 486-490. DOI: 10.11675/j.issn.0253-4304.2020.04.27.
[71]
RodeloJR, De la RosaG, ValenciaML, et al. D-dimer is a significant prognostic factor in patients with suspected infection and sepsis [J]. Am J Emerg Med, 2012, 30( 9): 1991- 1999. DOI: 10.1016/j.ajem.2012.04.033.
[72]
沈国锋李响倪金迪,. 低分子肝素治疗对ICU脓毒症患者急性肺损伤/急性呼吸窘迫综合征的影响[J]. 中国急救医学, 2016, 36( 12): 1130- 1132. DOI: 10.3969/j.issn.1002-1949.2016.12.017.
ShenGF, LiX, NiJD, et al. The effects of actue lung injury/acute respiratory distress syndrome with sepsis in ICU treated with low molecular weight heparin [J]. Chin J Crit Care Med, 2016, 36(12): 1130-1132. DOI: 10.3969/j.issn.1002-1949.2016.12.017.
[73]
戴琳琳. 低分子肝素抗凝治疗对ICU脓毒症患者的效果观察[J]. 医学理论与实践, 2019, 32( 1): 51- 53. DOI: 10.19381/j.issn.1001-7585.2019.01.023.
DaiLL. Effect of anticoagulation with low molecular weight heparin on sepsis patients in ICU [J]. J Med Theor Prac, 2019, 32(1): 51-53. DOI: 10.19381/j.issn.1001-7585.2019.01.023.
[74]
YealyDM, KellumJA, HuangDT, et al. A randomized trial of protocol-based care for early septic shock [J]. N Engl J Med, 2014, 370( 18): 1683- 1693. DOI: 10.1056/NEJMoa1401602.
[75]
MounceyPR, OsbornTM, PowerGS, et al. Trial of early, goal-directed resuscitation for septic shock [J]. N Engl J Med, 2015, 372( 14): 1301- 1311. DOI: 10.1056/NEJMoa1500896.
[76]
PeakeSL, DelaneyA, BaileyM, et al. Goal-directed resuscitation for patients with early septic shock [J]. N Engl J Med, 2014, 371( 16): 1496- 1506. DOI: 10.1056/NEJMoa1404380.
[77]
中华医学会急诊医学分会,中国医师协会急诊医师分会,中国人民解放军急救医学专业委员会,. 脓毒症液体治疗急诊专家共识[J]. 中华急诊医学杂志, 2018, 27( 1): 30- 38. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1671-0282.2018.01.007.
Emergency Medicine Branch of Chinese Medical Association, Emergency Physicians Branch of Chinese Medical Association, Emergency Medicine Committee of the People's Liberation Army of China, et al. Expert consensus on emergency treatment of sepsis with liquid [J]. Chin J Emerg Med, 2018, 27(1): 30-38. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1671-0282.2018.01.007.
[78]
RaghunathanK, NailerP, KonoskeR. What is the ideal crystalloid? [J]. Curr Opin Crit Care, 2015, 21( 4): 309- 314. DOI: 10.1097/MCC.0000000000000218.
[79]
DemlingR, LaLondeC, SaldingerP, et al. Multiple-organ dysfunction in the surgical patient: pathophysiology, prevention, and treatment [J]. Curr Probl Surg, 1993, 30( 4): 345- 414. DOI: 10.1016/0011-3840(93)90054-k.
[80]
张艺平韩鹏. 中药抗内毒素研究新进展[J]. 中国中西医结合急救杂志, 2001, 8( 2): 122. DOI: 10.3321/j.issn:1008-9691.2001.02.028.
ZhangYP, HanP. New progress in the study of anti-endotoxin of traditional Chinese medicine [J]. Chin J TCM WM Crit Care, 2001, 8(2): 122. DOI: 10.3321/j.issn:1008-9691.2001.02.028.
[81]
MengM, KlingensmithNJ, CoopersmithCM. New insights into the gut as the driver of critical illness and organ failure [J]. Curr Opin Crit Care, 2017, 23( 2): 143- 148. DOI: 10.1097/MCC.0000000000000386.
[82]
王慧芳王方岩常平,. 肠道微生态与脓毒症[J/OL]. 中华危重症医学杂志(电子版), 2018, 11( 6): 415- 419. DOI: 10.3877/cma.j.issn.1674-6880.2018.06.013.
WangHF, WangFY, ChangP, et al. Intestinal microecology and sepsis [J/OL]. Chin J Crit Care Med (Electronic Edition), 2018, 11(6): 415-419. DOI: 10.3877/cma.j.issn.1674-6880.2018.06.013.
[83]
余丹凤翁银燕徐建,. 大承气汤对行机械通气严重脓毒症患者炎症反应和免疫调节功能的影响[J]. 中国中医药科技, 2011, 18( 3): 181- 182. DOI: 10.3969/j.issn.1005-7072.2011.03.003.
YuDF, WengYY, XuJ, et al. Effects of Da Chengqi decoction on inflammatory responses and immunologic function of severe sepsis patients with ventilation [J]. Chin J Tradit Med Sci Technol, 2011, 18(3): 181-182. DOI: 10.3969/j.issn.1005-7072.2011.03.003.
[84]
YinQ, LiCS. Treatment effects of Xuebijing injection in severe septic patients with disseminated intravascular coagulation [J/OL]. Evid Based Complement Alternat Med, 2014: 949254 [ 2020-04-23]. https://www.hindawi.com/journals/ecam/2014/949254.
[85]
金铭李春盛. 血必净注射液对重症脓毒症凝血功能及预后影响的研究[J]. 中华内科杂志, 2009, 48( 3): 235- 236. DOI: 10.3760/cma.j.issn.0578-1426.2009.03.017.
JinM, LiCS. The effect of Xuebijing injection on coagulation and prognosis in severe sepsis [J]. Chin J Intern Med, 2009, 48(3): 235-236. DOI: 10.3760/cma.j.issn.0578-1426.2009.03.017.
[86]
郭昌星杨兴易林兆奋,. 生脉注射液对全身炎症反应综合征患者血浆血管活性介质影响的临床观察[J]. 中国中西医结合急救杂志, 2004, 11( 4): 239- 241. DOI: 10.3321/j.issn:1008-9691.2004.04.008.
GuoCX, YangXY, LinZF, et al. Clinical observation on effects of Shengmai injection (生脉注射液) on plasma vasoactive mediators in patients with systemic inflammatory response syndrome [J]. Chin J TCM WM Crit Care, 2004, 11(4): 239-241. DOI: 10.3321/j.issn:1008-9691.2004.04.008.
[87]
陈德昌景炳文杨兴易,. 大黄对危重症患者胃肠道的保护作用[J]. 中华危重病急救医学, 2000, 12( 2): 87- 90. DOI: 10.3760/j.issn:1003-0603.2000.02.008.
ChenDC, JingBW, YangXY, et al. The protective effect of rhubarb on gut in critical illness [J]. Chin Crit Care Med, 2000, 12(2): 87-90. DOI: 10.3760/j.issn:1003-0603.2000.02.008.
[88]
陈德昌马丽琼刘绍泽. 大黄对脓毒症大鼠肠道细菌及其移位的影响[J]. 中华危重病急救医学, 2009, 21( 1): 17- 20. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1003-0603.2009.01.005.
ChenDC, MaLQ, LiuSZ. Effects of rhubarb (大黄) on intestinal flora and bacterial translocation in rats with sepsis [J]. Chin Crit Care Med, 2009, 21(1): 17-20. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1003-0603.2009.01.005.
[89]
王红民孙荣青张少雷. 丹参多酚酸盐对急性肺损伤防治作用的实验研究[J]. 中国中西医结合急救杂志, 2011, 18( 2): 110- 112. DOI: 10.3969/j.issn.1008-9691.2011.02.015.
WangHM, SunRQ, ZhangSL. An experimental research on salvianolate for prevention and treatment of acute lung injury in rats [J]. Chin J TCM WM Crit Care, 2011, 18(2): 110-112. DOI: 10.3969/j.issn.1008-9691.2011.02.015.
[90]
黄增峰陈德昌陈如康,. 人参皂甙对烫伤脓毒症大鼠细胞免疫功能的影响[J]. 中国中西医结合急救杂志, 2006, 13( 4): 225- 227. DOI: 10.3321/j.issn:1008-9691.2006.04.009.
HuangZF, ChenDC, ChenRK, et al. Effects of ginsenosides on cyto-immunologic function in scalded rats with sepsis [J]. Chin J TCM WM Crit Care, 2006, 13(4): 225-227. DOI: 10.3321/j.issn:1008-9691.2006.04.009.
XieJ, WangH, KangY, et al. The epidemiology of sepsis in Chinese ICUs: a national cross-sectional survey [J]. Crit Care Med, 2020, 48( 3): e209- e218. DOI: 10.1097/CCM.0000000000004155.